Osmia bicolor

Feldkennzeichen

Die Weibchen der 9-11 mm grossen Art sind dank rein schwarzer Behaarung von Kopf und Brust und rein roter Behaarung des Hinterleibes nur mit Osmia cornuta zu verwechseln, die jedoch deutlich grösser ist und einen gehörnten Kopfschild hat.

Männchen (Merishausen SH, April 1989). Photo © Andreas Müller.

Die Männchen sind im Feld kaum sicher bestimmbar.

Lebensraum

Besiedelt eine Vielzahl unterschiedlicher Lebensräume, falls ein hohes Angebot an leeren Schneckengehäusen zur Verfügung steht: Wald- und Heckensäume, brachliegende Wiesenflächen, Kiesgruben und Steinbrüche, lückig bewachsene Abhänge, Ruderalflächen, extensiv genutzte Weiden. Alljährlich geschnittene Wiesenflächen können nur als Nahrungshabitat genutzt werden, da sie keine leeren Schneckengehäuse aufweisen.

Nahrungspflanzen

Ausgesprochen polylektische Art, die sogar den windblütigen Pollen von Carex oder Plantago sammelt. Nachgewiesen ist bislang die Nutzung des Pollens der folgenden 18 Pflanzenfamilien: Apiaceae, Asparagaceae, Asteraceae, Boraginaceae, Brassicaceae, Caprifoliaceae, Cistaceae, Cyperaceae, Fabaceae, Lamiaceae, Papaveraceae, Plantaginaceae, Primulaceae, Ranunculaceae, Rosaceae, Salicaceae, Saxifragaceae und Violaceae. (Westrich 1989, Müller 1991, Müller 2018).

Nistbiologie

Nistet in leeren Schneckengehäusen mittlerer Grösse (z.B. Arianta, Cepaea, Crepidula, Fruticicola, Helicella, Monacha, Xerophila, junge Helix-Gehäuse), die aussen mit zahlreichen kleinen Flecken aus Pflanzenmörtel beklebt werden. Der Grund für dieses auch bei anderen schneckenhausnistenden Bienen vorkommende Verhalten ist noch immer unklar, diskutiert werden eine individuelle Markierung, eine optische Tarnung, eine erhöhte Griffigkeit für die Bewegung des Gehäuses (s. unten) oder ein Verhaltensrelikt.

Weibchen trägt Pflanzenmörtel ein (Flaach ZH, 1974). Photo © Albert Krebs.

Die Nester enthalten meist nur eine einzige Brutzelle, die gegen aussen, nicht aber gegen innen mit einer Wand aus zerkauten Laubblattstückchen (z.B. von Potentilla, Fragaria, Glaucium, Ononis, Salix, Sanguisorba, Rosa, Polygonum, Vicia) begrenzt ist. Seltener werden pro Gehäuse zwei bis maximal fünf Brutzellen angelegt, die in diesem Fall durch dünne Trennwände aus Pflanzenmörtel voneinander getrennt sind. Für die Verproviantierung einer Brutzelle wurden 27-39 Sammelflüge gezählt, wofür bei optimalen Wetterverhältnissen 4-6 Stunden benötigt wurden. Für den Nestverschluss werden unmittelbar vor die äusserste Zellabschlusswand auf einer Länge von rund 1-2 cm zahlreiche kleine Steinchen, Erdbröckchen, Schalenbruchstücke oder Holzstückchen angehäuft, bevor eine weitere Wand aus Pflanzenmörtel eingezogen wird, so dass ein dreischichtiger Verschlusspfropfen entsteht, der meist mehr oder weniger weit im Innern des Schneckengehäuses verborgen ist, aber auch bis an die Gehäusemündung reichen kann. Häufig ist die mittlere Schicht aus dicht gepackten Fremdpartikeln durch eine oder zwei Pflanzenmörtelwände zusätzlich gekammert. Nach Fertigstellung des Nestverschlusses wird das Gehäuse so gedreht, dass die Gehäusemündung direkt gegen den Erdboden gerichtet ist. Gelegentlich wird das Gehäuse sogar bis zu 1.5 cm tief in den Boden versenkt, indem das Erdreich unter dem Nest oberflächlich abgegraben wird.

Geöffnetes einzelliges Nest mit verschlusspfropfen und Larve auf Nahrungsvorrat (Merishausen SH, 1975). Photo © Albert Krebs.

Zum Schluss wird das Gehäuse mit Hunderten von einzeln aus mehreren Metern Distanz herbeigetragenen, 1-15 cm langen Föhrennadeln, dürren Halmen u.ä. überdeckt. Es entsteht so ein dichter und bis zu faustgrosser Schutzbau, unter dem das Nest vollständig verborgen und so möglicherweise vor optisch orientierten Räubern geschützt ist. Die Weibchen benötigen für den Bau des Schutzbaus auch bei guten Wetter mehrere Stunden bis zu einem ganzen Tag. Offenbar haben sie ihre Nester auch nach Abschluss der Abdeckarbeit noch längere Zeit unter Kontrolle, wurden doch die Nester nach wiederholter experimenteller Entfernung der Schutzschicht auch nach mehreren Tagen immer wieder zugedeckt. (Friese 1897a, Friese 1923, Stöckhert 1933, Grozdanic & Vasic 1965, Bonelli 1972, Amiet 1973, Bellmann 1981, Westrich 1989).

Weibchen landet mit Föhrennadel am Nest (in Schneckenhaus), Tarnung (Flaach ZH, 1974). Photo © Albert Krebs.

Getarnte Nester, Weibchen mit Halm (Agasul ZH, 2004). Photo © Albert Krebs.

Parasiten

Als Futterparasit wird die Keulenwespe Sapyga quinquepunctata (Sapygidae) genannt. Raubparasiten sind die Goldwespen Chrysura cuprea, C. refulgens und C. trimaculata (Chrysididae) und die Erzwespe Eulophus osmiarum (Eulophidae). (Berland & Bernard 1938, Strumia 1997, Grissell 2007).

Paarungsstrategie

Die Männchen fliegen auf der Suche nach paarungswilligen Weibchen mehr oder weniger konstante Flugbahnen ab, die nicht durch Duftstoffe markiert werden. Meist bilden die Flugbahnen mehrerer Männchen ein dichtes Netz, ohne dass es zu aggressiven Interaktionen zwischen den bahnfliegenden Individuen kommt. Anflugspunkte entlang der Flugbahnen sind einerseits die Blüten der Pollen- und Nektarpflanzen der Weibchen, andererseits am Boden liegende leere Schneckengehäuse. Da die Weibchen als Pollengeneralisten auf den unterschiedlichsten Pflanzen Pollen sammeln, können die Männchen ihre Paarungschancen beträchtlich erhöhen, wenn sie zusätzlich leere Schneckengehäuse auf schlüpfende oder nestsuchende Weibchen hin kontrollieren. Die Männchen schlafen einzeln oder in kleinen Gruppen in Schneckengehäusen. (Müller 1991).

Lebenszyklus

Überwintert als Imago in einem selbst gesponnenen Kokon innerhalb der Brutzelle. Eine Generation pro Jahr. Hauptflugzeit der Männchen von Anfang März bis Ende Mai, der Weibchen von Mitte März bis Anfang Juli, wobei der Schlüpfhöhepunkt der Männchen dem der Weibchen deutlich vorausgeht. (Bellmann 1981, Müller 1991).

Phänologie von Osmia bicolor in der Schweiz.

Verbreitung

Ganze Schweiz, fehlt auf der Alpensüdflanke. Bis 2300 m. Häufig, im Mittelland verbreitet.

Höhenverteilung von Osmia bicolor in der Schweiz.

Bedrohungsstatus

Osmia bicolor wird in der Roten Liste als nicht bedroht (LC) eingestuft (Müller & Praz 2024). Damit gehört sie nicht zu den gefährdeten Arten und ist keine Rote Liste Art.